• 产品名称:CELLiGENT 3D 类器官培养基质胶套装 CG0301-10
  • 产品货号:CG0301-10
  • 产品规格:10ml
  • 产品品牌:CELLiGENT
  • 供应商:CELLiGENT
  • 产品产地: ** 产品价格:¥询价
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  • 见包装
  • 详细信息:
  • CELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶套装

     

    Catalog No. CG0301-2CG0301-4CG0301-10

    Specification 2ml-kit 4ml-kit 10ml-kit

    Storage 根据组分保存温度要求储存. 1 年保存.

    一、产品描述

    CELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶套装包含整套基质胶、胶体固定液、胶体溶解液,可应用到 3D 细胞培养与微环境应用等;本试剂盒操作便利且可调控基质胶硬度进行多种细胞培养测试;植物胶体可快速形成水凝胶, 请操作前详细阅读此使用指南。

    CELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶材料为植物来源,无动物成分)

    二、应用

    • 3D 类器官培养。

    • 3D 细胞球体培养试验

    • 细胞侵袭

    • 细胞迁移

    • 小鼠皮下成瘤

    • 适合用于 3D 细胞药物筛检平台

    • 细胞生长和分化

    • 代谢/毒理学研究

    • 体外和体内血管生成分析

    三、适用细胞种类

    • 原代细胞 • 干细胞

    四、试剂盒组分

     

     

    CG0301-2CG0301-4CG0301-10

    (对应数量和内容)

     

    货号.

    Components

    Amount

    Content

    Storage

    CG0301-A

    A 基质胶 (2X)

    4820

    0.5mL / tube

    Store at-20

    CG0301-C

    C 缓冲溶液 (10X)

    121

    1*10ml2*10ml1*50 mL / BT

    Store at 4

    CG0301-D

    D 缓冲溶液 (10X)

    121

    1*10ml2*10ml1*50 mL / BT

    Store at 4

    五、使用步骤:

    A、试剂制备

    A 基质胶:将A 基质胶溶于 37℃水浴槽回温 10 分钟, 确认完全融解.

    C 缓冲溶液(1X)制备:使用前将 10X C 缓冲溶液用冰的无细胞培养液(例如: 无血清 DMEMopt-MEM) 备成 1X C 缓冲溶液。(不要用 PBS 稀释 C 缓冲液) .

    D 缓冲溶液(1X)制备: 使用前用冷的 1x PBS 稀释 10X D 缓冲溶液至 1X D 缓冲溶液.

    BCELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶的制备

    全部步骤需要在无菌环境内操作,操作步骤如下:

    1.  24 孔培养板放置于冰上预冷。

    2. 细胞计数后取 2×105~2×107 细胞与 0.5 毫升 37℃ 培养基均匀混合,并与 0.5 毫升 37A 胶按照

    1:1 等比例均匀混合,最终细胞密度 1*105~1*107cells/mL

    :请选择适当的培养溶液与条件进行试验。

    3.  20-40 微升步骤 2 含细胞的混合 A 胶溶液滴于 步骤 1 预冷的培养板上,胶体将于 5 分钟内成胶。注: 测试胶体是否成胶,可用微量吸管尖温和的触碰胶体表面进行确认。


    4. 待胶体成胶后,添加 1 毫升冰的 1X C 缓冲溶液,并盖过步骤 3 的胶溶液,固定 15 分钟。

    5.  15 分钟固定后,小心的吸取 C 缓冲溶液并置换为适合此细胞生长之培养基溶液。

    6 将含有细胞的胶于 37°C 二氧化碳培养箱内进行 7~14 天的培养,并观察细胞球体的形成,按正常培养基更换频率进行更换操作。

    C、溶胶与收集细胞球体准备程序

    小心的将培养基吸取移除,并用 1X PBS 进行清洗。

    小心的将 1X PBS 吸取移除,并添加 1 毫升冰的 D 缓冲溶液,盖过胶滴于室温反应 5 分钟。温和的用 1 毫升移液管吸取,直到胶滴完全溶解。

    将含有细胞球体的溶液吸入 1.5 毫升离心管,用 1000 rpm 的转速离心 10 分钟,移除上清液体并收集细胞球体做分析。

    D、收集单颗细胞准备程序

    在分离单细胞前,先按上述溶胶与收集细胞球体准备程序进行操作

    1. 添加 trypsin-EDTA 并与收集的细胞球体于 37°C 混合反应。

    2.  1 毫升移液管混合,直到细胞体完全分解。

    3. 待细胞球体完全分解,加入 3 倍体积的 1X PBS,并用 1000 转的转速进行离心 10 分钟,并移除上清液体收集沉淀的单细胞做分析。

    E、细胞迁移实验准备程序

    1. 准备 Transwell 装置及无血清 DMEM 细胞培养液 (用于稀释A )

    2. A  (2X) (货号:CG0301-A) 置于 37 ℃水浴槽回温 10 分钟,确认完全融解。

    3. 用无血清 DMEM 细胞培养液将A  (2X)稀释 50 倍。

    4. 根据 Transwell 上室底部面积加入 100-120 ul/cm2 稀释后的 A 胶稀释液到 Transwell 上室中。

    5. 将步骤 4  4 ℃冰箱孵育 30 分钟。

    6. 将多余的稀释液吸出,并在 Transwell 上室中加入无血清的癌细胞系细胞悬浮液使细胞浓度约 7.5 x 104 cells/well.

    7.  Transwell 下室中加入含 10 %血清的细胞培养液做为 chemoattractant,吸引癌细胞系进行迁移。

    F、小鼠皮下成瘤实验准备程序

    1.  A  (2X) (货号:CG0301-A) 置于 37 ℃水浴槽回温 10 分钟,确认完全融解。

    2. C 缓冲溶液(10X) 货号:CG0301-C)与冰的无血清细胞培养液 (例如: 无血清DMEM 或内含VEGFheparin 的无血清 DMEM) 1:4 比例均勻混合配置。(例如:1 ml C 缓冲溶液(10X) 4 ml 无血清DMEM 混合,不可用 PBS 稀释)

    3.  A  (2X) 与约 2*106 cells/ml 的癌细胞系悬浮液按 1:1 等比例均匀混合配置,癌细胞系悬浮液最终浓度约为 106 cells/ml

    4. 选用 21-25 G 的针头 (避免破坏细胞),抽取 0.2-0.3 ml 预冷稀释后的C 缓冲溶液。(C 缓冲溶液用于 A

    胶成胶反应)

    5. 使用步骤 4 的同一支针管,再抽取 0.1-0.7 ml 含细胞的 A 胶混合液,在冰上孵育五分钟。

    6. 以皮下注射方式注射 0.3-1.0 ml 至小鼠。(需一次注射完含 C 缓冲溶液的 A 膠混合液) 1: 注射体积可依不同实验目的做调整,若为血管生成研究注射体积需至少 0.5 ml

    2: 此步骤依实验需求可执行或不执行,若需呈现明显的皮下注射隆起效果,可于注射完毕后,在小鼠

    注射部位冰敷 5-10 分钟。

    7. 培养一至三周后可摘取接种的肿瘤组织。

    3: 若为血管生成研究,应注射含 VEGF heparin A 胶,以促进血管生成。约三天后,可摘取含有新血管生成的肿瘤组织。

     

     

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